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锰元素的免疫激活研究与应用

锰(ManganeseMn)是过渡金属元素,原子序数为25。锰在地壳中含量丰富,是排名第5的金属。锰容易被氧化,因此常以氧化物、碳酸盐和硅酸盐的形式存在。锰元素有多种化合价,包括+2+3+4+6+7,在机体中常常是以+2+3价存在,+2价是最稳定的价态,+3价易被歧化成+2价和+4价。锰是一种机体必须的微量元素,对于机体免疫系统、生殖系统、血糖水平、骨骼生长、凝血反应、机体活性氧水平的调控都十分重要。锰发挥功能是通过与蛋白结合调控其活性,包括氧化还原酶、水解酶、连接酶、裂解酶、转移酶、异构酶、精氨酸酶、谷氨酰胺合成酶、磷酸烯醇丙酮酸脱羧酶和锰超氧化物歧化酶。哺乳动物中锰元素的含量大约是0.3-2.9 μg/g湿组织,是动物中含量最高的几种元素之一。锰在不同组织、不同细胞及不同细胞器中的分布差异很大,而锰的检测又很不方便,没有特异性的探针或者螯合剂,因此锰的生理学功能知之甚少。近些年,锰离子在免疫方面的功能逐渐被揭示,锰离子作为一种可能的第二信使对于机体内的信号转导和免疫调控都有着重要作用。


锰元素在体内的转运受到严格调控,美国FDA推荐成年人每天的锰摄入量大约2 mg,但只有3~5%的锰会被生物吸收利用,其吸收取决于胃液酸度和锰化合物的溶解度。大约97%的食入锰通过肝脏和胆汁代谢并由粪便排出。机体内有多种锰元素转运通道调控锰的转运,转入通道有:ZIP8ZIP14NRAMP2Transferrin等;转出通道有:ZnT10FPN1TMEM165SPCA1ATP13A2等。


锰离子转运通道(1)


1983年,Rogers等报道了锰离子能激活自然杀伤性细胞(NK细胞),给小鼠注射氯化锰溶液能增强 NK 细胞的杀伤能力,同时能检测到I-干扰素的上调(2)Smialowicz等发现给小鼠注射氯化锰溶液能增强腹腔巨噬细胞的吞噬能力,增强脾脏细胞的抗体依赖细胞介导的细胞毒作用,且增强效果与氯化锰诱导的I-干扰素相关,暗示锰离子也能增强适应性免疫反应(3)Srisuchart等给小鼠每天腹腔注射氯化锰溶液,4 周后小鼠脾脏淋巴细胞的增殖能力增强,再用抗原刺激淋巴细胞增殖时有很强的协同作用,10 mg/kg 的氯化锰处理能增强混合淋巴反应(4)


最近随着人们对胞内识别DNAcGAS-STING通路研究的深入,锰离子在天然免疫信号通路中的作用逐渐被揭示。cGAS负责识别细胞质中游离的双链DNAdsDNA)并合成第二信使2’3’-cGAMP,后者结合并激活下游的接头蛋白STINGSTING招募激酶TBK1和转录因子IRF3/7激活下游I-型干扰素及炎症因子的表达。高璞等发现cGAS合成2’3’-cGAMP需要dsDNAGTPATP和金属离子的存在,金属离子可以是Mg2+Mn2+ (5)。北京大学生命科学学院的蒋争凡教授团队发现病毒感染细胞时,储存在线粒体和高尔基体中的锰会被释放到细胞质中,浓度可高达20 μM。而在体外培养的细胞中,2-5 μMMn2+处理THP1细胞可显著抑制病毒的感染和复制。通过基因敲除细胞和基因敲除小鼠实验,蒋争凡团队证实细胞器中释放出来的Mn2+能特异性激活cGAS-STING通路,诱导I-型干扰素和炎症因子产生;Mn2+可以使cGASDNA的敏感性提高上万倍(6)。随后,Hooy等报道锰离子可以不依赖dsDNA直接激活cGAS,并且提升cGAS的催化效率(7)。蒋争凡实验室与北大生科院苏晓东实验室的合作研究进一步证实了锰离子激活cGASdsDNA不依赖性,他们的晶体结构研究显示锰离子与cGAS结合导致的cGAS构象变化类似于cGAS-DNA结合。更重要的是,锰离子直接激活的cGAS催化cGAMP合成时,由于锰离子在cGAS催化口袋中位置不同,产生的二核苷酸线性中间体pppG(2’5’)pA不需经过翻转即可进行第二步催化,因此反应效率更高(8)


锰离子的警报素和激动剂功能(7)


锰离子激活cGAS合成cGAMP模式图8


近年的研究表明天然免疫对肿瘤的免疫监视至关重要,如自然杀伤细胞(NK)可以不依赖抗体和补体直接杀伤肿瘤细胞,巨噬细胞()和树突状细胞(DC)负责发现肿瘤细胞并将肿瘤抗原递呈给并激活细胞毒性T细胞(CD8+ T细胞),后者特异性识别、杀灭肿瘤细胞。肿瘤细胞则进化出了一系列逃逸机制,以躲避宿主免疫系统的攻击。其中以上调免疫检查点分子的表达最为著名,如肿瘤细胞高表达PD-L1/CTLA-4抑制T细胞的活化。PD-1CTLA-4抗体的临床应用是当今最令人激动的突破和国际公认最有前景的癌症治愈手段,获得了2018年的诺贝尔生理学或医学奖。然而,免疫检查点抑制剂只对大约20%的肿瘤患者有效,如何提高肿瘤患者对免疫治疗的反应性是最关键的问题。近期一系列的研究发现,肿瘤组织中(旁)DCcGAS-STING可被肿瘤细胞来源的DNA激活,促进这些抗原递呈细胞的成熟,进而将肿瘤特异性抗原递呈给T细胞,对于激活机体的抗肿瘤免疫反应起到至关重要的作用。目前全球许多科研机构和制药公司纷纷投入巨资,寻找cGAS-STING通路的激动剂。然而目前已知的这些激动剂大多制备复杂,成本高昂,而且无法有效进入细胞,因此治疗效果不理想。由于锰离子可以直接激活cGAS-STING通路,蒋争凡团队与解放军总医院生物治疗科韩为东教授团队合作研究发现锰在机体免疫监视肿瘤中也发挥必不可少的作用。缺锰小鼠体内的肿瘤细胞生长显著加快、肿瘤肺转移显著增多;外源添加Mn2+显著促进小鼠体内抗原递呈细胞对于肿瘤抗原的递呈能力,促进NK细胞和细胞毒性T细胞在肿瘤组织内的浸润和肿瘤特异性杀伤。他们提出Mn2+PD-1抗体联合使用的锰免疗法在多种肿瘤模型中都可以显著增强PD-1抗体的肿瘤治疗效果,并减少PD-1抗体的使用量。如果把肿瘤的免疫治疗看成是一辆行驶的汽车,那么PD-1抗体的使用相当于解除了汽车的刹车(松刹车),而cGAS-STING激活剂(如Mn2+)的使用则像是给发动机加油(踩油门)。只有二者同时使用,才能使肿瘤免疫治疗这辆汽车全速行驶(9)I 期临床试验初步证实了锰免疗法在复发难治及进展期肿瘤中的临床安全性和有效性,目前该方案在单病种中的 II 期临床正在有序推进。类似的锰离子通过激活cGAS-STING通路,进而促进CD8+ T细胞活化的肿瘤治疗方法也被国立新加坡大学的刘海燕实验室及郑州大学张振中实验室所证实(10,11)


锰免疗法模式图9


基于锰离子能强烈激活cGAS-STING通路产生大量干扰素等细胞因子和趋化因子,而这些细胞因子和趋化因子对于免疫反应活化非常重要,蒋争凡团队开发出新型纳米锰合物佐剂(MnJ),既是免疫激活剂,又是递送系统。动物实验表明MnJ佐剂能显著增强灭活病毒、重组蛋白、肽段、多糖类抗原的免疫效果,不仅可以激活体液免疫,也能激活细胞免疫及黏膜免疫,尤其是细胞毒性T细胞免疫反应(12)。目前人用疫苗中的铝佐剂在激活细胞免疫方面效率较低,因此无法发挥有效的抗病毒和抗肿瘤的效果,动物疫苗中常用的白油佐剂存在着生物兼容性差、毒副作用较强的问题。疫苗企业都在积极推动能同时激活细胞免疫和体液免疫的新佐剂研发。另一方面,上述这些佐剂绝大多数依赖进口,属于“卡脖子”产品。锰元素作为一种生物必需的微量元素,具有很好的生物安全性,且在机体内的平衡受到严格的调控,在免疫佐剂方面有着巨大的应用潜力,可用于抗体制备、疫苗研发和肿瘤治疗。动物实验的结果表明锰佐剂效果优于传统铝佐剂、白油佐剂和弗氏佐剂,有六大优势:

1)激活细胞免疫,可用于抗病毒、抗肿瘤。

2)激活体液免疫,抗体产生速度快、浓度高。

3)可用于黏膜免疫吸入使用,非常方便。

4)普适性高,肽、病毒、多糖,效果优异。

5)无可见的毒副作用。

6)无需乳化,直接使用,非常方便。


此外,含锰的纳米颗粒也被应用于肿瘤治疗和成像检测。肿瘤微环境(TME)的特点是低氧、酸性 pH、活性氧自由基(ROS)的升高, Xiao Yu Wu等用一种含有二氧化锰的多功能胶体颗粒(A-MnO2 NPs 来调节 TME,二氧化锰能与过氧化物反应,产生氧气和升高 pH,同时还能下调促进肿瘤生长和侵染的两个调控因子——低氧诱导因子 HIF1α和血管内皮生长因子 VEGF(13)。泰乐影(锰福地吡三钠注射液)是一种已上市的磁共振造影剂,用于疑有转移性或肝细胞癌等肝脏病变的检查。锰福地吡主要被肝脏摄取,其增强特性主要源于二价锰离子外层有5个不成对电子,不成对电子与水分子核之间的相互作用可以明显缩短组织的T1弛豫时间,而对T2弛豫时间没有影响。

锰福地吡三钠


综上所述,免疫佐剂增强机体对抗原的免疫应答,产生更强的免疫保护作用和更长时程的免疫记忆,对于提升疫苗作用效果及促进肿瘤的免疫治疗具有重要意义。另一方面,免疫佐剂的使用可减少抗原或者免疫检查点抑制剂(如PD-1抗体)的使用量,对老年、儿童及肿瘤患者等免疫力低下人群意义重大。在各种治疗性疫苗特别是肿瘤的个性化免疫疫苗之中,佐剂的使用也将极大地推动个性化疫苗的研发及使用。


参考文献

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  2. Rogers, R. R., Garner, R. J., Riddle, M. M., Luebke, R. W. & Smialowicz, R. J. Augmentation of murine natural killer cell activity by manganese chloride. Toxicol Appl Pharmacol 70, 7-17 (1983).

  3. Smialowicz, R. J., Luebke, R. W., Rogers, R. R., Riddle, M. M. & Rowe, D. G. Manganese chloride enhances natural cell-mediated immune effector cell function: effects on macrophages. Immunopharmacology 9, 1-11 (1985).

  4. Srisuchart, B., Taylor, M. J. & Sharma, R. P. Alteration of humoral and cellular immunity in manganese chloride-treated mice. J Toxicol Environ Health 22, 91-99, doi:10.1080/15287398709531053 (1987).

  5. Gao, P. et al. Cyclic [G(2',5')pA(3',5')p] is the metazoan second messenger produced by DNA-activated cyclic GMP-AMP synthase. Cell 153, 1094-1107, doi:10.1016/j.cell.2013.04.046 (2013).

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  7. Hooy, R. M., Massaccesi, G., Rousseau, K. E., Chattergoon, M. A. & Sohn, J. Allosteric coupling between Mn2+ and dsDNA controls the catalytic efficiency and fidelity of cGAS. Nucleic Acids Res 48, 4435-4447, doi:10.1093/nar/gkaa084 (2020).

  8. Zhao, Z. et al. Mn(2+) Directly Activates cGAS and Structural Analysis Suggests Mn(2+) Induces a Noncanonical Catalytic Synthesis of 2'3'-cGAMP. Cell reports 32, 108053, doi:10.1016/j.celrep.2020.108053 (2020).

  9. Lv, M. et al. Manganese is critical for antitumor immune responses via cGAS-STING and improves the efficacy of clinical immunotherapy. Cell research, doi:10.1038/s41422-020-00395-4 (2020).

  10. Song, Y. et al. Manganese enhances the antitumor function of CD8(+) T cells by inducing type I interferon production. Cell Mol Immunol, doi:10.1038/s41423-020-00524-4 (2020).

  11. Hou, L. et al. Manganese-Based Nanoactivator Optimizes Cancer Immunotherapy via Enhancing Innate Immunity. ACS Nano 14, 3927-3940, doi:10.1021/acsnano.9b06111 (2020).

  12. Zhang, R. et al. The Manganese Salt (MnJ) Functions as A Potent Universal Adjuvant. bioRxiv, 783910, doi:10.1101/783910 (2019).

  13. Prasad, P. et al. Multifunctional albumin-MnO(2) nanoparticles modulate solid tumor microenvironment by attenuating hypoxia, acidosis, vascular endothelial growth factor and enhance radiation response. ACS Nano 8, 3202-3212, doi:10.1021/nn405773r (2014).







用于单/多克隆抗体制备


1)抗原/佐剂混合

根据不同动物选择合适的免疫剂量。对于家兔,参考免疫抗原量为200-1000 μg;对于大鼠,参考免疫抗原量为100-500 μg;对于小鼠,参考免疫抗原量在10-100 μgMnJβ锰佐剂推荐工作浓度为0.5-1 mg/mL,推荐使用量为免疫抗原量的5-10倍。以小鼠为例,将60 μg抗原与300 μg (60 μL) MnJβ锰佐剂用vortex涡旋仪混合均匀并室温静置3-5分钟,再加入磷酸盐缓冲液PBS或者生理盐水至佐剂的浓度为1 mg/mL,再次用vortex涡旋仪充分混合均匀后,即可用于小鼠免疫。抗原与佐剂的混合需现配现用,在30分钟内完成免疫接种效果最佳。

2)免疫接种方法

MnJβ锰佐剂适用于肌肉、皮下、腹腔、粘膜等多种位点的免疫。大型动物多为皮下或肌肉免疫,小型动物可采用腹腔等其它的免疫部位。以小鼠为例,前述300 μL的抗原佐剂混合物可全部用于腹腔免疫,或者肌肉、皮下、腹腔多点免疫(左右大腿各50 μL,皮下左右两点各50 μL,腹腔100 μL)。多数情况下,分散的多点免疫效果更好。

3)免疫周期

首次免疫和第二针免疫间隔7-14天,后面每针间隔7天。多数情况下,首次免疫和二次免疫之间间隔较长的14天要比间隔较短的7天更有利于获取高亲和力抗体。免疫流程结束一周以后,实验动物的血清无需纯化即作为多抗用于WB/ELISA等实验;两周以后,其脾脏细胞可用于杂交瘤制备和单抗筛选。为了获取更多更高亲和力抗体,推荐免疫实验动物三到四次。由于通过腹腔注射的MnJβ锰佐剂会一过性地富集于脾脏,而前者会显著影响杂交瘤制备及其后续筛选过程。因此,如果需要在分离脾脏细胞之前,通过再次注射抗原的方法进行免疫激发,注意在这次额外的免疫激发不要通过腹腔注射而是进行肌肉/皮下注射,或者考虑只使用抗原进行注射而不添加锰佐剂。

4)其他动物的免疫接种方法

如果要在其他动物上MnJβ锰佐剂应用于抗体制备,可以参考下列流程设计免疫接种方案。首先,需要确定所使用抗原类型在所要免疫动物上的常规最佳用量。例如,在某种动物中使用弗氏佐剂以制备多克隆抗体为目的时,所用于免疫注射的重组蛋白类抗原多数情况下是1mg,那么这个1mg同样也是适合于锰佐剂的抗原用量,此信息需要使用者根据具体情况自行确定。之后,按照1:5-10的比例根据抗原用量确定锰佐剂的用量;在上一个例子中,可以根据1mg的抗原用量确定锰佐剂的用量在5-10mg左右。进一步,根据MnJβ锰佐剂推荐工作浓度1 mg/mL锰佐剂的用量确定免疫注射体积;因此,在上述例子中注射体积为5-10mL。最后,根据不同注射部位的锰佐剂吸收能力,最终确定注射方案:如果具体操作可行的话,腹腔注射是吸收能力最强、免疫效果最好的单一注射途径。如果具体动物的腹腔操作有困难的话,则推荐进行多点的肌肉/皮下注射;对于体型大于家兔的大动物,单个肌肉/皮下注射位点锰佐剂的极限吸收能力一般为0.5-1mg左右,超过此剂量的单位点的过多注射浪费抗原从而降低免疫效果。原则上,越多越分散的注射位点对于产生高亲和力的抗体越有利。

另外,MnJβ锰佐剂“推荐工作浓度为1 mg/mL”、“推荐使用量为免疫抗原量的5-10倍”。当某些情况下两者明显无法同时满足的时候,保持MnJβ佐剂在最终免疫注射液中的工作浓度为1 mg/mL是要最重要的,而不必强求抗原和锰佐剂的比例。例如,当抗原用量和注射体积都已经确定的情况下,最重要的是保持MnJβ佐剂的工作浓度为1 mg/mL,而并非锰佐剂和抗原用量的比例,需要特别注意。




用于疫苗创制研究


考虑到具体疫苗技术路线的多样性,这里仅能给出原则性参考使用方法:在疫苗注射液中按照10%-25%的体积分数添加MnJβ锰佐剂后,充分混合搅拌、振荡均匀后即可分装保存待用。由于MnJβ锰佐剂的密度和水性注射液的密度接近,因此10%-25%的体积分数同样也是质量分数。含有锰佐剂的疫苗注射液的理想物化状态应是米汤样悬浊液,透过光源观察可以看到非常连续的絮状固体,在自然沉降条件下,72小时以内沉降的絮状固体体积不应小于澄清上清的液体体积,而且稍加颠倒混匀以后即可恢复米汤样悬浊液的形状。

一般情况下,MnJβ锰佐剂和水溶性免疫激动剂没有明显的配伍禁忌可以尝试搭配使用,但是,锰佐剂基本无法和水包油、油包水等油性乳液型佐剂稳定共存。一方面,锰佐剂的纳米颗粒很可能会破坏微乳滴的稳定结构;另一方面,油性物质会破坏MnJβ锰佐剂的Mn2+释放效果,从而使得两者均无法发挥其设计功能。

MnJβ锰佐剂偏好中性的疫苗注射液环境,酸碱度低于5-6以下的过酸环境会显著破坏锰佐剂持续释放Mn2+的能力;而酸碱度高于9-10以上的过碱条件中则会生成不稳定的氢氧化锰类物质。

如果不确定使用锰佐剂配制出的疫苗是否符合要求,除了进行常规抗体生成测试以外,这里提供一个快速检测方案。将含有100μg锰佐剂的疫苗注射液全部注射进入小鼠腹腔,18小时后,使用5mL磷酸盐缓冲液PBS灌洗小鼠腹腔并抽取出不少于3mL的腹腔灌洗液。正常情况下,应当在此腹腔灌洗液中检测到不少于106个的CD11b+ Gr-1+中性粒细胞、CD11b+ F4/80+单核巨噬细胞和CD3- NK1.1+自然杀伤NK细胞。此现象是锰佐剂成功释放Mn2+并激活小鼠固有免疫应答的早期现象。如果此现象消失或者非常显著的减弱,则要考虑锰佐剂的设计功能被疫苗中的某些组分破坏,从而无法有效地在疫苗中发挥出佐剂效果。

更多涉及到疫苗应用中锰佐剂的具体问题,欢迎直接向本公司反馈,我们将第一时间提供帮助和建议。


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    1、Wang, Z., Y. Yuan, C. Chen, C. Zhang, F. Huang, M. Zhou, H. Chen, Z. F. Fu and L. Zhao (2021). "Colloidal manganese salt improves the efficacy of rabies vaccines in mice, cats, and dogs." J Virol: JVI0141421.2021910 点击查看

    2、He, X., L. Ding, K. Cao, H. Peng, C. Gu, Y. Li, D. Li, L. Dong, X. Hong, X. Wang, M. Fu, C. Qiu, C. Zhu, Z. Zhang, S. Song, C. Wang, Z. Jiang, Y. Xie, Z. Qi, C. Zhao, P. Zhao, X. Zhang and J. Xu (2021). "A human cell-based SARS-CoV-2 vaccine elicits potent neutralizing antibody responses and protects mice from SARS-CoV-2 challenge." Emerg Microbes Infect 10(1): 1555-1573.2021910 点击查看

    3、Zhang, R., C. Wang, Y. Guan, X. Wei, M. Sha, M. Yi, M. Jing, M. Lv, W. Guo, J. Xu, Y. Wan, X. M. Jia and Z. Jiang (2021). "Manganese salts function as potent adjuvants." Cell Mol Immunol 18(5): 1222-1234.2021910 点击查看



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